ARCTODIAPTOMUS SALINUS (DADAY 1885) (CALANOIDA, COPEPODA) IN SALINE WATER BODIES OF THE CRIMEA
Keywords:
Copepoda, Arctodiaptomus salinus, hypersaline lakes, osmolytes, CrimeaAbstract
A. salinus inhabits the Crimean lakes under the salinity from 5 to 210 ‰. The earlier experiments have shown that the upper salinity limit of the species is 70 ‰. Authors explain this discrepancy of field and experimental data that at salinities above 100 ‰ copepods consume exoosmolytes, mainly from food. A. salinus is an osmokonformer, to survive under osmotic stress it utilizes mechanisms of cell level - accumulates the osmolytes. We found A. salinus under high salinities, where Dunaliella salina blooming observed. D. salina intensifies the synthesis of osmolytes under high salinities; they can be up to 80 % of the dry weight of the cells. Probably A. salinus gets enough osmolytes by consuming Dunaliella to live under salinities above 70 ‰.
References
Ануфриева Е.В., Шадрин Н.В. Разнообразие ракообразных в гиперсолёном озере Херсонесское (Крым) // Экосистемы, их оптимизация и охрана. - 2012. - 7. - С. 55–61.
Веснина Л.В. Структура и функционирование зоопланктонных сообществ озёрных экосистем юга Западной Сибири: Дисс. … докт. биол. наук. Барнаул, 2003. - 309 с.
Деткова Е.Н., Болтянская Ю.В. Осмоадаптация галоалкофильных бактерий: роль осморегуляторов и возможности их практического применения // Микробиология. - 2007. – 76, № 5. - С. 581-593.
Заварзин Г.А. Лекции по природоведческой микробиологии / М.: Наука, 2003. - 348 с.
Крупа Е.Г. Структура зоопланктона экологически разнотипных водоёмов и водотоков Казахстана: Автореф. дисс. … докт. биол. наук. Алматы, 2010. - 39 с.
Курнаков Н.С., Кузнецов В.Г., Дзенс-Литовский А.И., Равич М.И.. Соляные озёра Крыма / М. – Л.: АН СССР, 1936. - 278 с.
Литвиненко Л.И., Литвиненко А.И., Бойко Е.Г. Артемия в озёрах Западной Сибири / Новосибирск: Наука, 2009. - 304 с.
Мюллер П., Нойман П., Шторм Р. Таблицы по математической статистике. М.: Финансы и статистика, 1982. – 272 с.
Новоселова Н. В., Туркулова В. Н. К методике массового культивирования живых кормов в условиях низкой температуры для молоди ценных морских видов рыб / Основные результаты комплексных исследований в Азово-Черноморском бассейне и Мировом океане: Тр. ЮгНИРО. – 2008. – 46. – С. 41 – 47.
Семик А.М. К биологии веслоногого рачка – Diaptomus salinus (E. Daday) - кормового объекта для кефалей / Культивирование кефалей в Азово-Черноморском бассейне. - Москва: ВНИ-РО, 1991. - С.116-125.
Хахинов В.В., Намсараев Б.Б., Абидуева Е.Ю., Данилов Э.В. Гидрохимия экстремальных водных систем с основами гидробиологии / Улан-Удэ: Изд-во Бурятск. Госунив-та, 2007. - 148 с.
Шадрин Н.В. Гиперсолёные озера Крыма: общие особенности / Ю.Н. Токарев, З.З. Финенко, Н.В. Шадрин (ред.). Микроводоросли Чёрного моря: проблемы сохранения биоразнообразия и биотехнологического использования. - Севастополь, ЭКОСИ-Гидрофизика, 2008. - С. 85-93.
Шадрин Н.В. Ракообразные в гиперсолёных водоемах: специфика существования и адаптации //Актуальные проблемы изучения ракообразных континентальных вод: Сборн. лекций и докл. Междунар. школы-конф. (Борок, 5 – 9 ноября 2012 г.). - Кострома: Костромской печатный дом, 2012. – С. 316-319.
Alonso M. Anostraca, Cladocera and Copepoda of Spanish saline lakes // Hydrobiologia. - 1990. - 197. - P. 221-231.
Alonso M. Branchiopoda and Copepoda (Crustacea) in Mongolian Saline Lakes // Mongol. J. Biol. Sci. – 2010. - 8. - P. 9-16.
Bayly I.A.E., Boxshall G.A. An all-conquering ecological journey: from the sea, calanoid copepods mastered brackish, fresh, and athalassic saline waters // Hydrobiologia. - 2009. - 630. - P. 39–47.
Ben-Amotz A., Sussman I., Avron M. Glycerol production by Dunaliella // Experientia. - 1982. - 38. - P. 49 – 52.
Bodea C., Nicoara E., Illyes G. The carotenoids of Arctodiaptomus salinus (Daday) // Rev. Roumaine Biochimie. – 1965. – 2. – P. 205 – 211.
Chen H., Jiang J.-G. Osmotic responses of Dunaliella to the changes of salinity // Journal of Cellular Physiology. - 2009. - 219. - P. 251–258.
De Vooys C.G.N., Geenevasen J.A.J. Biosynthesis and role in osmoregulation of glycine-betaine in the Mediterranean mussel Mytilus galloprovincialis LMK // Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. - 2002. - 132. - P. 409–414.
Goolish E.M., Burton R.S. Energetics of osmoregulation in an intertidal copepod: effects of anoxia and lipid reserves on the pattern of free amino acid accumulation // Funct. Ecol. - 1989. - 3. - P. 81–89.
Hamaidi F., Defaye D., Semroud R. Copepoda of Algerian fresh waters: checklist, new records, and comments on their biodiversity // Crustaceana. - 2010. - 83. - P. 101-126.
Kipriyanova L.M., Yermolaeva N.I., Bezmaternykh D.M. Dvurechenskaya S.Y., Mitrofanova E.Y. Changes in the biota of Chany Lake along a salinity gradient // Hydrobiologia. - 2007. - 576. - P. 83–93.
Lindley L.C., Phelps R.P., Davis D.A., Cummins K.A. Salinity acclimation and free amino acid enrichment of copepod nauplii for first-feeding of larval marine fish // Aquaculture. - 2011. - 318. - P. 402–406.
Mageed A.A.A. Effect of some environmental factors on the biodiversity of holozooplankton community in lake Qarun, Egypt // Egyptian Journal of Aquatic Research. - 2005. - 31. - P. 230-250.
Marrone F. The microcrustacean fauna of Sicily and the Central Mediterranean Sea area - current knowledge and gaps to be filled // Polish Journal of Ecology. - 2006. - 54. - P. 681-686.
Oren A. Thermodynamic limits to microbial life at high salt concentrations // Environmental Microbiology. - 2011. - 13. - P. 1908–1923.
Patrick M.L., Bradley T.J. Regulation of compatible solute accumulation in larvae of the mosquito Culex tarsalis: osmolarity versus salinity // The Journal of Experimental Biology. - 2000. - 203. - P. 831–839.
Rokneddine A., Chentoufi M. 2004. Study of salinity and temperature tolerance limits regarding four crustacean species in a temporary salt water swamp (Lake Zima, Morocco) // Animal Biology. - 2004. - 54. - P. 237-253.
Samchyshyna L.V. Ecological Characteristic of Calanoids (Copepoda, Сalanoida) of the Inland Waters of Ukraine //Vestnik zoologii.- 2008. - 42. - P. 32–37.
Scholz T., Bray R. A., Kuchta R., Repova R. Larvae of gryporhynchid cestodes (Cyclophyllidea) from fish: a review // Folia Parasit. - 2004. – 51. – P. 131–152.
Svetlichny L., Hubareva E., Khanaychenko A. Calanipeda aquaedulcis and Arctodiaptomus salinus are exceptionally euryhaline osmoconformers: evidence from mortality, oxygen consumption, and mass density patterns // Mar. Ecol. Progr. Ser. - 2012. - 470. - P. 15-29.
Van der Meeren T., Olsen R.E., Hamre K., Fyhn H.J. Biochemical composition of copepods for evaluation of feed quality in production of juvenile marine fish // Aquaculture. - 2008. - 274. - P. 375–397.
Yancey P.H. Water Stress, Osmolytes and Proteins // American Zoologist. - 2001. - 41. - P. 699–709.
Yancey P.H., Heppenstall M., Ly S. Andrell R.M., Gates R.D., Carter V.L., Hagedorn M. Betaines and dimethylsulfoniopropionate as major osmolytes in cnidaria with endosymbiotic dinoflagellates // Physiological and Biochemical Zoology. - 2010. - 83. - P. 167 – 173.
