АНТИОКСИДАНТНИЙ КОМПЛЕКС КАМБАЛИ-КАЛКАНА PSETTA (SCOPHTHALMUS) MAXIMA MAEOTICA (L., 1758) ЯК ІНДИКАТОР ФІЗІОЛОГІЧНОГО СТАНУ ОРГАНІЗМУ: ТКАНИННІ ОСОБЛИВОСТІ
Ключові слова:
антиоксидантний комплекс, перекисне окислення ліпідів, індикатор фізіологічного стану, тканинні особливості, камбала-калкан, Psetta (Scophthalmus) maxima maeotica, Чорне мореАнотація
Досліджено стан антиоксидантного (АО) комплексу та його співвідношення з процесами перекисного окислення ліпідів (ПОЛ) у чорноморської камбали-калкан. В зябрах калкана встановлено найменший рівень ТБК-активних продуктів та найвищу активність АО ферментів високого та низького споріднення до субстрату. Печінка та червоні м’язи мають максимальний рівень ПОЛ, ведуча роль в їх захисті належить каталазі та пероксидазі. Білі м’язи та гонади відрізняються мінімальною антиоксидантною активністю та порівняно високім вмістом ТБК-активних продуктів.
Посилання
Басова М. М. Функциональные особенности химического состава печени, мышц и гонад самцов и самок черноморской камбалы: автореф. дисс. ... канд. биол. наук. – Симферополь, 2002. – 18 с.
Гостюхина О. Л., Солдатов А. А., Головина И. В. Влияние тетрадецилтриметиламмоний бромида на состояние ферментативной системы антиоксидантной защиты тканей черноморского моллюска Mytilus galloprovincialis Lam. // Доп. НАН України. – 2007. – № 11. – С. 147 – 151.
Кения М. В., Лукаш А. И., Гуськов Е. П. Роль низкомолекулярных антиоксидантов при окислительном стрессе // Успехи соврем. биологии. – 1993. – 113, вып. 4. – С. 456 – 470.
Кулинский В. И., Колесниченко Л. С. Биологическая роль глутатиона // Успехи соврем. биол. – 1990. – 110, вып. 1(4). – С. 20 – 33.
Леус Ю. В., Грубинко В. В. Активность антиоксидантной системы карпа при действии ионов тяжелых металлов // Гидробиол. журн. – 1998. – 34, № 2. – С. 59 – 63.
Лукьянова Л. Д., Балмуханов Б. С., Уголев А. Т. Кислородзависимые процессы в клетке и ее функциональное состояние. – М.: Наука, 1982. – 301 с.
Меньшикова Е. Б., Зенков Н. К. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных окислительных процессов // Успехи соврем. биол. – 1993. – 113, № 4. – С. 442 – 455.
Переслегина И. А. Активность антиоксидантных ферментов слюны здоровых детей // Лаб. дело. – 1989. – № 11. – С. 20 – 23.
Путилина Ф. Е. Определение содержания восстановленного глутатиона в тканях // Методы биохимических исследований. – Л.: Изд-во ЛГУ, 1982. – С.183 – 186.
Руднева И. И. Эколого-физиологические особенности антиоксидантной системы рыб и процессов перекисного окисления липидов // Усп. соврем. биол. – 2003. – 123, № 4. – С. 391 – 400.
Руднева-Титова И. И. Эколого-филогенетические особенности активности некоторых антиоксидантных ферментов и содержания антиоксидантов в тканях хрящевых и костистых рыб Черного моря // Журн. эволюц. биохимии и физиол. – 1997. – 33, № 1. – С. 29 – 37.
Световидов А. Н. Рыбы Чѐрного моря. – М.-Л.: Наука, 1964. – 546 с.
Солдатов А. А. Метаболические механизмы адаптации морских рыб к гипоксическим состояниям: автореф. дисс. …докт. биол. наук. – Симферополь, 2008. – 42 с.
Фридович И. Радикалы кислорода, пероксид водорода и токсичность кислорода // Свободные радикалы в биологии: В 2-х т. – М.: Мир, 1979. – Т. 1. – С. 272 – 314.
Шульман Г. Е. Физиолого-биохимические особенности годовых циклов рыб. – М.: Пищ. пром-сть, 1972. – 368 с.
Эмеретли И. В. Температурная зависимость активности лактатдегидрогеназы тканей черноморских камбал // Гидробиол. журн. – 2001. – 37, № 4. – С. 18 – 23.
Aleshko S. A., Lukyanova O. N. Seasonal variations of biotransformation and antioxidant parameters in liver of the smooth flounder Liopsetta pinnifasciata from Amursky Bay (Sea of Japan) // Russian J. Mar. Biol. – 2008. – 34, № 2. – Р. 135 – 138.
Ferreira M., Moradas-Ferreira P., Reis-Henriques M. A. Oxidative stress biomarkers in two resident species, mullet (Mugil cephalus) and flounder (Platichthys flesus), from a polluted site in River Douro Estuary, Portugal // Aquat. Toxicol. – 2005. – 71, № 1. – P. 39 – 48.
Livingstone D. R., Lemaire P., Mattews A. A. Prooxidant, antioxidant and 7-ethoxyresorufin o-deethylase (EROD) activity responses in liver of dab (Limanda limanda) exposed to sediment contaminated with hydrocarbons and other chemicals // Mar. Pollut. Bull. – 1993. – 26, № 11. – P. 602 – 606.
Livingstone D.R. Contaminant-stimulated reactive oxygen species production and oxidative damage in aquatic organisms // Mar. Pollut. Bull. – 2001. – 42, № 8. – P. 656 – 666.
Moore M. N. Molecular and cellular pathology: summary // Mar. Ecol. Prog. Ser. – 1992. – 91. – P. 117 – 119.
Napierska D., Podolska M. Relationship between biomarker responses and contaminant concentration in selected tissues of flounder (Platichthys flesus) from the Polish coastal area of the Baltic Sea // Oceanologia. – 2008. – 50, № 3. – Р. 421 – 442.
Ohkawa H., Ohishi N., Yagi K. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction // Analyt. Biochem. – 1979. – 95, № 1. – P. 351 – 358.
Shulman G. E., Love R. M. The Biochemical Ecology of Marine Fishes. – Advances in Marine Biology. – San Diego: Acad. Press, 1999. – 36. – 351 pp.
