ЕРИТРОЇДНІ ЕЛЕМЕНТИ ГЕМОЛІМФИ ANADARA ІNAEQUІVALVІS (MOLLUSCA: ARCIDAE) В УМОВАХ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЇ АНОКСІЇ: ФУНКЦІОНАЛЬНІ І МОРФОМЕТРИЧНІ ХАРАКТЕРИСТИКИ
Ключові слова:
аноксія, Anadara іnaequіvalvіs , гемолімфа, еритроцити, морфологія, цитометрія, осмотична резистентністьАнотація
В експериментальних умовах на протязі 3 діб досліджено вплив аноксії на морфо-функціональні і цитометричні характеристики еритроїдних елементів гемолімфи двостулкового молюска Anadara іnaequіvalvіs (Bruguіere, 1789). Аноксія викликає гідратацію цитоплазми і набрякання (свеллинг) еритроїдних елементів. Про це свідчить характер зміни еритроцитарних індексів (MCV, MCH, MCHC) і лінійних характеристик клітин. Це супроводжувалося лізисом переважно старих клітинних форм, які мають нижчу осмотичну стійкість. Руйнування старої еритроцитарної маси приводило до відносного росту вмісту в гемолімфі клітин більш ранніх генерацій. Останнє обумовлювало збільшення середньоклітинного об’єму ядра, вмісту базофільних зернистих включень у цитоплазмі і підвищення стійкості еритроїдних елементів молюска до осмотичного шоку.
Посилання
Золотницкая Р. П. Методы гематологических исследований / Лабораторные методы исследования в клинике (справочник). – М.: Медицина, 1987. – С. 106 – 148.
Парфенова И. А, Солдатов А. А. Эритрограмма циркулирующей крови скорпены в условиях экспериментальной гипоксии // Морск. экол. ж. – 2005. – 4, N2. – С. 59 - 67.
Савина М. В. Механизмы адаптации тканевого дыхания в эволюции позвоночных. – С.-Петербург: Наука, 1992. – 200 с.
Солдатов А. А. Цитохромная система и напряжение кислорода в мышечной ткани морских рыб различной естественной активности // Ж. эволюц. биохим. физиол. – 1996. – 32 , N2. – С.142 - 146.
Солдатов А. А., Русинова О. С., Трусевич В. В., Звездина Т. Ф. Влияние гипоксии на биохимические показатели эритроцитов скорпены // Укр. биохим. журн. – 1994. – 66, 5. – С.115 - 118.
Ташкэ К. Введение в количественную цитогистологическую морфологию. – Бухарест: Изд-во Академии Респ. Румынии, 1980. – 291 с.
Шульман Г. Е., Аболмасова Г. И., Столбов А. Я. Использование белка в энергетическом обмене гидробионтов // Усп. совр. биол. – 1993. – 113. – С. 576 – 586.
Arndt-Sullivan C., Lechaire J-P., Felbeck H. Extreme tolerance to anoxia in the Lucinoma аequizonata symbiosis // J. Shellfish Research. – 2008. – 27, N 1. – P. 119 – 127.
Boutilier R. G., Ferguson R. A. Nucleated red cell function: metabolism and pH regulation // Can. J. Zool. – 1989. – 67, N 12. – P. 2986 – 2993.
Chew S. F., Gan J., Ip Y. K. Nitrogen metabolism and excretion in the swamp eel, Monopterus albus, during 6 or 40 days of estivation in mud // Physiol. Biochem. Zool. – 2005. – 78. – P. 620 - 629.
Holden J. A., Pipe R. K., Quaglia A., Ciani G. Blood cells of the arcid clam, Scapharca inaequivalvis // J. Mar. Biol. Assoc. U.K. – 1994. – 74, N 2. – P. 287 - 299.
Hughes G. M., Johnston I. A. Some responses of the electric ray (Torpedo marmorata) to low ambient oxygen tensions // J. Exp. Biol. – 1978. – 73. – P. 107 – 117.
Jensen F. B. Red blood cell pH, the Bohr effect, and other oxygenation-linked phenomena in blood O2 and CO2 transport (review) // Acta Physiol. Scand. – 2004. – 182, N 3. – P. 215 – 227.
Lai J. C. C., Kakuta I., Mok H. O. L., Rummer J. L., Randall D. Effects of moderate and substantial hypoxia on erythropoietin level in rainbow trout kidney and spleen // J. Exp. Biol. – 2006. – 209. – P. 2734 – 2738.
Lane H. C., Tianang D. Effect of hypoxia and hyperoxia on rainbow trout red cells // Amer. Zool. – 1992. – 32, N 5. – P. 170 A.
Lee A-C., Lee M-C., Lee Y-H. Candidates for a hypoxia-stress indicator in the hard clam, Meretrix lusoria // Aquaculture. – 2008. – 278, N 1-4. – P. 150 – 155.
Mommsen Th. P., French C .J., Hochachka P. W. Sites and patterns of protein and amino acid utilization during spawning migration of s almon // Can. J. Zool. – 1980. – 58. – P. 1785 – 1799.
Nikinmaa M. Adrenergic control of oxygen transport in salmonids // Fischerei-Forschung. – 1991. – 29, N 3. – P. 64 – 65.
Owen T. G., Hochachka P. W. Purification and properties of dolphin muscle aspartate and alanine transaminases and their possible roles in the energy metabolism of diving mammals // Biochem. J. – 1974. – 143. – P. 541 – 553.
Perry S. F., Montpetit C. J., Julio A. E., Moore K. The influence of chronic anaemia on catecholamine secretion in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // J. Comp. Physiol. – 1999. – 169, N 4/5. – P. 335 – 343.
Perry S. F., Reid S. G. The effects of acclimation temperature on the dynamics of catecholamine release during acute hypoxia in the rainbow trout Oncorhynchus mykiss // J. Exp. Biol. – 1994. – 186. – P. 289 – 307.
Phillips M. C. L., Moyes C. D., Tufts B. L. The effects of cell ageing on metabolism in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) red blood cells // J. Exp. Biol. – 2000. – 203, N 6. – P. 1039 – 1045.
Waarde A. Biochemistry of non-protein nitrogenous compounds in fish including the use of amino acids for anaerobic energy production // Comp. Biochem. Physiol. – 1988. – 91B. – P. 207 - 228.
Wickramasinghe S. N. Erythropoietin and the human kidney: evidence for an evolutionary link from studies of Salmo gairdneri // Comp. Biochem. Physiol. – 1993. – 104A. – P. 63 - 65.
Wootton E. C., Dyrynda E. A., Ratcliffe N. A. Bivalve immunity: comparisons between the marine mussel (Mytilus edulis), the edible cockle (Cerastoderma edule) and the razor-shell (Ensis siliqua) // Fish & Shellfish Immunology. – 2003. – 15, N 3. – P. 195 – 210.
Zwaan A., Cortesi P., Thillart G., Storey K. B. Differential sensitivities to hypoxia by two anoxiatolerant marine molluscs: A biochemical analysis// Mar. Biol. – 1991. – 111, N 3. – P. 343 – 351.
Zwaan. A., Schaub B. E. M., Babarro J. M. F. Anoxic survival of Macoma balthica: the effect of antibiotics, molybdate and sulphide // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. – 2001. – 256. – P. 241 – 251.
