ВЖИВАННЯ ХЛОРАМФЕНIКОЛУ ПРИ КУЛЬТИВУВАННІ МІКРОВОДОРОСТІ ISOCHRYSIS GALBANA І КОЛОВЕРТОК BRACHIONUS PLICATILIS
Ключові слова:
мікроводорості, коловертки, хлорамфенікол, проточна цитометрія, Brachionus plicatilis, Isochrysis galbanaАнотація
За допомогою проточної цитометрії досліджували вплив синтетичного антибіотика хлорамфеніколу в концентраціях 5, 10, 50 і 500 мг л-1 на динаміку чисельності бактерій і клітин мікроводоростей в культурі Isochrysis galbana при експонуванні 6 днів. У всіх концентраціях хлорамфенікол надавав токсичну дію на клітини мікроводоростей, що виявлялося в достовірному збільшенні долі клітин з низьким вмістом хлорофілу, представлених мертвими і загибельними клітинами. Токсичний ефект виявлявся після 24 годин експерименту, і його міра була пропорційна концентрації антибіотика. Зниження чисельності бактерій в культурі I. galbana спостерігали з другої доби. Мінімальної концентрації антибіотика (5 мг. л -1) було достатньо для елімінації чутливих до нього бактерій. Збільшення дози не вело до посилення антибіотичного ефекту. Оброблена хлорамфеніколом (5 мг. л -1, 24 год) культура I. galbana не надавала токсичного ефекту на коловерток Brachionus plicatilis. Чисельність бактерій в середовищі B. plicatilis при додаванні обробленої культури мікроводоростей була нижче, ніж в контролі, протягом всього експерименту. Приріст коловерток при живленні обробленою хлорамфеніколом культури I. galbana, був декілька вище, ніж в контролі.
Посилання
Вольберг М. М. Взаимодействие популяций микроводорослей и бактерий в модельной экосистеме: автореф. дисс…. канд. биол. наук. – М.: МГУ, 1988. – 24 с.
Ханайченко А. Н. Микробиологические проблемы культивирования морских рыб на ранних стадиях развития (на примере камбалообразных) и пути их решения // Морск. экол. журн. – 2005. – 4, № 2. – С. 23 – 37.
Campa-Cordova A. I., Luna-Gonzalez A., Ascencio F., Cortés-Jacinto E., Cáceres-Martínez C. J. Effects of chloramphenicol, erythromycin, and fura-zolidone on growth of Isochrysis galbana and Chaetoceros gracilis // Aquaculture. – 2006. – 260 (29). – P. 145 – 150.
Coutteau P. Microalgae / Lavens P., Sorgeloos P. (eds.). Manual on the production and use of live food for aquaculture. FAO Fisheries Technical Paper. – №. 361. – Rome, FAO. – 1996. – P. 10-13.
Cove, D., Audineau P., Nicolas J. L. Rotifer-rearing technology / Barnabe G. Aquaculture. – West Sussex England: Ellis Harwood, 1990. – P. 232 – 245.
Huang Z., Liu X., Hu Z. Duan S. Effects of antibiotics on the growth of Isochrysis zhangjiangensis and axenic culture // Ecologic Science. – 2007. – 2. – P. 120 – 125.
Huys G., Bartie K., Cnockaert M., Hoang Oanh DT., Phuong NT., Somsiri T., Chinabut S. Biodiver-sity of chloramphenicol-resistant mesophilic heterotrophs from Southeast Asian aquaculture environments // Res. Microbiol. – 2007. – 158. – P. 228 – 235.
John S., Patterson J. Probiotic activity and antibiotic resistance of microbes isolated from shrimp pond // J. Mar. Biol. Ass. India. – 2007. – 49 (2). – P. 127 – 133.
Joo-Yeon Youn, Sung Bum Hur. Antibiotics and their optimum concentration for axenic culture of marine microalgae // Algae. – 2007. – 22 (3). – P. 229 – 234.
Ferreiraa M., Maseda A., Fabregasa J., Otero A. Enriching rotifers with “premium” microalgae Isochrysis aff. galbana clone T-ISO // Aquaculture . – 2007. – 279. – P. 126 – 130.
Lai H.T., Hou J.H., Su C.I., Chen C.L. Effects of chloramphenicol, florfenicol, and thiamphenicol on growth of algae Chlorella pyrenoidosa, Isochrysis galbana, and Tetraselmis chui // Ecotoxicol Environ Saf. – 2009. – 72 (2). – P. 329-34.
Lupin H. M. Human health aspects of drug and chemical use in aquaculture // The use of veterinary drugs and vaccines in Mediterranean aquaculture. Options Mediterraneennes, – 2009. – 86, A. – P. 95 – 103.
Мarie D., Partensky F., Jacquet S., Vaulot D. Enumeration and cell cycle analysis of natural populations of marine picoplankton by flow cytometry using the nucleic acid stain SYBR Green I // Appl. Environ. Microbiol. - 1997. – 63. – P. 186 – 193.
Munro P. D., Birkbeck T. H., Barbour A. Bacterial flora of rotifers (Brachionus plicatilis): Evidence for a major location on the external surface and methods for reducing the rotifer bacterial load // Fish Farming Techn. – 1993. – P. 93 – 100.
Munro P., Hendersonb R., Barbourc A., Birkbeck T. H. Partial decontamination of rotifers with ultraviolet radiation: the effect of changes in the bacterial load and flora of rotifers on mortalities in start-feeding larval turbot // Aquaculture. – 1999. – 170. – P. 229 – 244.
Rodgers C. J., Furones M. D. Antimicrobial agents in aquaculture: Practice, needs and issues // The use of veterinary drugs and vaccines in Mediterranean aquaculture. Options Mediterraneennes. – 2009. – 86, A. – P. 41 – 59.
Subhash S. K., Lipton A. P., Paul Raj R. Antibiotic exposure to minimize microbial load in live feed Isochrysis galbana used for larval rearing of Indian pearl oyster Pinctada fucata // Current science. – 2004. – 87 (10). – P. 1339 – 1340.
Suga K., Tanaka Y., Sakakura Y., Hagiwara A. Axenic culture of Brachionus plicatilis using antibiotics // Hydrobiologia. – 2010. – 662. – P. 113-119.
Supranee C., Somsiri T., Bartie K.L Huys G., Oanh D.T.H., Giacomini M., Bertone S. The use of antimicrobials in Asian aquaculture: aims of the EU-Asiaresist Project // World Aquaculture (Bangkok, 2005): Abstr. – Bangkok, 2005 – P. 729.
Zheng M., Zheng L., Wang L., Han X. Effects of five kinds of antibiotics stressed on chlorophyll fluorescence parameters of Isochrysis sp. CCMM5001 // Mar. Environ.l Sci. – 2011. – 4. – DOI CNKI:SUN:HYHJ.0.2011-04-027.
