ФІЗІОЛОГО-БІОХІМІЧНІ ХАРАКТЕРИСТИКИ ETTLIA CAROTINOSA KOMÁREK 1989 (CHLOROPHYCEAE) В УМОВАХ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО СТРЕСУ
Ключові слова:
Ettlia carotiniosa, вторинний каротиногенез, чисельність и розміри клітин, сумарні каротиноїдиАнотація
Вперше наведено експериментальні дані, що характеризують вплив хімічних активаторів вторинного каротиногенезу (CH3COONa, NaCl та суміші FeSO4 і H2O2) на динаміку чисельності і розмірів клітин і вмісту в них сумарних каротиноїдів у зеленій мікроводорості Ettlia сarotinosa Komárek 1989 при вирощуванні методом двохстадійної накопичувальної культури.
Посилання
Андреева В. М. Почвенные и аэрофильные зелёные водоросли (Chlorophyta: Tetrasporales, Chlorococcales, Chlorocarcinales). – СПб.: Наука, 1998. – 351 с.
Брянцева Ю. В., Курилов А. В. Расчет объемов клеток микроводорослей и планктонных инфузорий Черного моря. – Севастополь, 2003. –20 с.
Гапочка Л. Д. Об адаптации водорослей. – М.: Изд-во МГУ, 1981. – 80 с.
Гродзинский Д. М. Надежность растительных систем. – Киев: Наукова думка, 1983. – 365 с.
Данцюк Н. В. Влияние ацетата натрия на интенсивность вторичного каротиногенеза у зелёной микроводоросли Haematococcus pluvialis // Экология моря. – 2010. – Спец. вып. 80: Биотехнология водорослей. – С. 44 – 50.
Костіков І. Ю., Романенко П. О., Демченко Е. М. і інш. Водорості грунтів України (історія та методи дослідження, система, конспект флори). – Київ: Фітосоціоцентр, 2001. – 300 с.
Методы физиолого-биохимического исследования водорослей в гидробиологической практике. – Киев: Наук. думка, 1975. – С. 228 – 230.
Минюк Г. С., Дробецкая И. В., Чубчикова И. Н. и др. Скрининг зелёных микроводорослей как потенциальных источников природных кетокаротиноидов. Актуальность, стратегия и тактика исследований // Экология моря. – 2010. – Спец. вып. 80: Биотехнология водорослей – С. 67 – 78.
Минюк Г. С., Терентьева Н. В., Дробецкая И. В. Сравнительная характеристика морфологических и физиолого-биохимических признаков трех штаммов Haematococcus pluvialis Flotow (Chlorophyta, Chlamydomonadales) // Альгология – 2007. – 17, № 2. – С. 148 – 159.
Минюк Г. С., Ерохин В. Е., Гордиенко А. П. и др. Физиолого-биохимические и биофизические характеристики одноклеточной водоросли Haematococcus pluvialis – перспективного источника природного астаксантина / Микроводоросли Чёрного моря: проблемы сохранения биоразнообразия и биотехнологического использования. – Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2008. – С. 353 – 378.
Терентьева Н. В., Дробецкая И. В., Чубчикова И. Н. и др. Влияние освещённости на физиолого-биохимические характеристики зелёной микроводоросли Haematococcus pluvialis (Chlamydomonadales) // Экология моря. – 2008. – Вып. 75. – С. 82 – 88.
Челебиева Э. С. Скрининг одноклеточных зелёных водорослей как потенциальных источников природных кетокаротиноидов. 3. Введение в лабораторную культуру и первичная оценка биотехнологического потенциала Ettlia carotinosa // Морск. экол. журн. – 2011. – Отд. вып. № 2. – С. 96 – 112.
Чубчикова И. Н., Дробецкая И. В., Минюк Г. С. и др. Скрининг одноклеточных зелёных водорослей как потенциальных источников природных кетокаротиноидов. 2. Особенности роста и вторичного каротиногенеза у представителей рода Bracteacoccus (Chlorophyсeae) // Морск. экол. журн.– 2011. – 10, № 1. – С. 91 – 97.
Чубчикова И. Н., Минюк Г. С., Дробецкая И. В., Данцюк Н. В. Хлорококковые микроводоросли как потенциальный источник природных кетокаротиноидов // Экология моря. – 2009. – Вып. 77. – С. 77 – 83.
Чубчикова И. Н., Минюк Г. С., Дробецкая И. В. Вторичный каротиногенез у зелёной микроводоросли Scotiellopsis rubescens Vinatz. в условиях природной освещённости и температуры. – Экология моря. – 2010. – Спец. вып. 81: Управление биосинтезом гидробионтов. – С. 77 – 81.
Boussiba S. Carotenogenesis in the green alga Haematococcus pluvialis: Cellular physiology and stress response // Physiol. Plant. – 2000. – 108. – P. 111 – 117.
Britton G. Worked examples of isolation and analysis carotenoids / Carotenoids. – Vol.1 A: Isolation and Analysis. – Basel: Birkhauser, 1995 – P. 199 – 225.
Cysewski G.R.; Lorenz R.T. Industrial production of microalgal cell-mass and secondary products—species of high potential: Haematococcus / Handbook of Microalgal Culture, Biotechnology and Applied Phycology. – Oxford: Blackwell Science, 2004. – P. 281 – 288.
Davies B. H., Hsu W. J., Chichester C. O. The mechanism of the conversion of beta-carotene into canthaxanthin by the brine shrimp Artemia salina L. (Crustacea: Branchiopoda) // Comp. Biochem. Physiol. – 1970. – 33. – Р. 601 – 615.
Deason T. R, Silva P. C., Watanabe S., Floyd G. L. Taxonomic status of the species of the green algal genus Neochloris. – Pl. Syst. Evol. – 177, No 3 – 4. – P. 213 – 219.
Elliot A M. Morphology and life history of Haematococcus pluvialis // Arch. Protistenk. – 1934. – 82. – P. 250 – 272.
Ettlia carotinosa strain SAG 213-4 18S ribosomal RNA gene, partial sequence. – GenBank: GU 292342. – http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuc core/283827865 .
Guiry M.D., Guiry G.M. AlgaeBase. World-wide electronic publication. – Galway: National University of Ireland, 2012. – http://www.algaebase.org;
Haematococcus sp. KORDI03 18S ribosomal RNA gene, partial sequence. – GenBank: FJ877140.1. – http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/269148116.
Komarek J. Polynuclearity of vegetative cells in coccal green algae from the family Neochloridaceae. – Arch. Protistenk. – 1989. – 137. – P. 255 – 273.
Lemoine Y., Schoefs B. Secondary ketocarotenoid astaxanthin biosynthesis in algae: a multifunctional response to stress // Photosynth. Res. – 2010. – 106. – P. 155 – 177.
Lichtenthaler H. K. Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic membranes // Methods Enzym. – 1987. – 148. – P. 350 – 382.
Neustupa J., Eliás M., Skaloud P. еt al. Xylochloris irregularis gen. et sp. nov. (Trebouxiophyceae, Chlorophyta), a novel subaerial coccoid green alga // Phycologia. – 2011. – 50, No 1. – P. 57 – 66.
Orosa M., Valero J. F., Herrero C. et al. Comparison of the accumulation of astaxanthin in Haematococcus pluvialis and other green microalgae under N-starvation and high light conditions // J. Biotechnol. Lett. – 2001. – 23, No 13. – P. 1079 – 1085.
Proctor V. W. Some Controlling Factors in the Distribution of Haematococcus pluvialis // Ecology. – 1957. – 38, No. 3. – P. 457 – 462.
Yamaguchi K., Nakano H., Murakami M. et al. Lipid composition of a green alga Botryococcus braunii // Agric. Biol. Chem. – 1987. – 51, No 2. – Р. 493 – 498.
