ДОСЛІДЖЕННЯ ВІРУСУ AcIV-E У СЕВРЮГИ ACIPENCER STELLATUS У ЧОРНОМУ ТА АЗОВСЬКОМУ МОРЯХ

Ю.П. Рудь; С.Г. Бушуєв; В. Хабаров; І.І. Грициняк; Л.П. Бучацький

doi:10.47143/1684-1557/2021.2.06

Ю.П. Рудь Інститут рибного господарства НААН
С.Г. Бушуєв ДУ «Інститут морської біології Національної академії наук України»
В. Хабаров Інститут рибного господарства та екології моря
І.І. Грициняк Інститут рибного господарства НААН
Л.П. Бучацький Інститут рибного господарства НААН

DOI: https://doi.org/10.47143/1684-1557/2021.2.06

Ключові слова: іридовірус, севрюга, Чорне море

Анотація

Специфічні осетрові нуклеоцитоплазматичні великі ДНК-вмісні віруси (sNCLDV) інфікують декілька видів з родини Acipenseridae. sNCLDV раніше відносили до некласифікованих представників родини Iridoviridae. Нещодавно їх перенесли до родини вірусів Mimiviridae. Один із цих вірусів, Acipenser iridovirus-European (AcIV-E), присутній у господарствах по всій Європі, де іноді спричиняє помірні або навіть чималі втрати осетрових. У цьому дослідженні ми наводимо дані ідентифікації вірусу AcIV-E у чутливого до виду – севрюги (Acipencer stellatus) з Чорного та Азовського морів. У 2020 році було відібрано зразки від севрюги в Одеській та Запорізькій областях в акваторіях Чорного та Азовського морів відповідно. Жодна з відібраних риб не демонструвала патологічних ознак захворювання, і у разі візуального спостереження всі особини були здорові. Зі зразків виділяли загальну ДНК та проводили ПЛР з використанням праймерів, націлених на різні фрагменти гена основного капсидного білка (MCP) вірусу AcIV-E. У жодному з досліджуваних зразків севрюги з обох морів не виявлено вірусоспецифічний генетичний матеріал, тоді як у контрольних реакціях очікувані продукти фрагментів гена MCP, а також фрагменти гена бета-актину були успішно ампліфіковані зі зразків ДНК риби та вірусу AcIV-E, виділеного від сибірського осетра в 2018–2019 роках. Хоча AcIV-E важко ідентифікувати у безсимптомних риб з природних популяцій, імовірно, вірус може відігравати свою роль у патології севрюги у басейні Чорного моря. Високий ризик поширення вірусу на природні популяції можливий, оскільки вірус був виявлений у осетрових господарствах, що базуються на річці Дніпро. Тому AcIV-E навіть за присутності інших патогенних мікроорганізмів слід досліджувати в риборозплідниках осетрових риб, а також у можливих векторах хвороби, але величезна площа моніторингу може бути проблемою.

Посилання

1. Axén, C., Vendramin, N., Toffan, A. (2018). Outbreak of Mortality Associated with Acipenser Iridovirus European (AcIV-E) Detection in Siberian Sturgeon (Acipenser baerii) Farmed in Sweden. Fishes, 3: 42. Retrieved from: https://doi.org/10.3390/fishes3040042.
2. Bigarré, L, Lesne, M, Lautraite, A, et al. (2017). Molecular identification of iridoviruses infecting various sturgeon species in Europe. Journal of Fish Diseases, 40:105–118. DOI: 10.1111/jfd.12498.
3. Bronzi, P., Rosenthal, H. (2014). Present and future sturgeon and caviar production and marketing: a global market overview. Journal of Applied Ichthyology, 30:1536–1546. Retrieved from: https://doi.org/10.1111/jai.12628.
4. Burcea, A., Popa, G.-O., Florescu, I.E., et al (2018). Expression Characterization of Six Genes Possibly Involved in Gonad Development for Stellate Sturgeon Individuals (Acipenser stellatus, Pallas 1771). Hindawi International Journal of Genomics, Article ID 7835637. Retrieved from: https://doi.org/10.1155/2018/7835637.
5. Ciulli, S., Volpe, E., Sirri, R., et al. (2016). Outbreak of mortality in Russian (Acipenser gueldenstaedtii) and Siberian (Acipenser baerii) sturgeons associated with sturgeon nucleo-cytoplasmatic large DNA virus. Veterinary Microbiology, 191:27–34. DOI: 10.1016/j.vetmic.2016.05.012.
6. Clouthier, S.C., Vanwalleghem, E., Copeland, S., et al. (2013). A new species of nucleo-cytoplasmic large DNA virus (NCLDV) associated with mortalities in Manitoba lake sturgeon Acipenser fulvescens. Diseases of Aquatic Organisms, 102:195–209. DOI: 10.3354/dao02548.
7. Clouthier, S.C., Vanwalleghem, E., Anderson E.D. (2015). Sturgeon nucleo-cytoplasmic large DNA virus phylogeny and PCR tests. Diseases of Aquatic Organisms, 117:93–106. DOI: 10.3354/dao02937.
8. Clouthier, S., Anderson, E., Kurath, G., Breyta, R. (2018). Molecular systematics of sturgeon nucleocytoplasmic large DNA viruses. Molecular Phylogenetics and Evolution, 128:26-37. DOI: 10.1016/j.ympev.2018.07.019.
9. FAO. 2018. The State of World Fisheries and Aquaculture 2018 – Meeting the sustainable development goals. Rome. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.
10. Hedrick, R.P., Groff, J.M., Mcdowell, T., Wingﬁeld, W.H. (1990). An iridovirus infection of the integument of the white sturgeon Acipenser transmontanus. Diseases of Aquatic Organisms, 8:39–44. DOI: 10.3354/dao008039.
11. Kurobe, T., Kwak, K.T., Macconnell, E., et al. (2010). Development of PCR assays to detect iridovirus infections among captive and wild populations of Missouri River sturgeon. Diseases of Aquatic Organisms, 93:31–42. DOI: 10.3354/dao02284.
12. Kurobe, T., Macconnell, E., Hudson, C., et al. (2011). Iridovirus infections among Missouri River sturgeon: initial characterization, transmission, and evidence for establishment of a carrier state. Journal of Aquatic Animal Health 23:9–18. DOI: 10.1080/08997659.2011. 545697.
13. Lapatra, S.E., Groff, J.M., Keith,I., et al. (2014). Case report: concurrent herpesviral and presumptive iridoviral infection associated with disease in cultured shortnose sturgeon, Acipenser brevirostrum (L.), from the Atlantic coast of Canada. Journal of Fish Diseases, 37:141–147. DOI: 10.1111/jfd.12147.
14. Mugetti, D., Pastorino, P., Menconi, V., et al., (2020). Two new sturgeon species are susceptible to Acipenser Iridovirus European (AcIV-E) infection. Pathogens, 9:156. DOI: 10.3390/pathogens9030156.
15. Mugetti, D., Pastorino, P., Menconi, V., et al., (2020). The old and the new on viral diseases in sturgeon. Pathogens, 9:146. DOI: 10.3390/pathogens9020146.
16. Munn, C.B. (2006). Viruses as pathogens of marine organisms – From bacteria to whales. J. Mar. Biol. Assoc. UK, 86:453. DOI: https://doi.org/10.1017/S002531540601335X
17. Pallandre, L., Lesne, M., de Boisséson, C. et al. (2018). Acipenser iridovirus-European encodes a replication factor C (RFC) sub-unit. Archives of Viroljgy, 163:2985. Retrieved from: https://doi.org/10.1007/s00705-018-3963-y.
18. Pallandre, L., Lesne, M., de Boisséson, C., et al. (2019). Genetic identiﬁcation of two Acipenser iridovirus-European variants using high-resolution melting analysis. Journal of Virological Methods, 265:105–112. Retrieved from: https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2018.12.006.
19. Rud, Y., Bigarré, L., Pallandre, L., Briand, F.-X., Buchatsky, L, 2020. First genetic characterization of sturgeon mimiviruses in Ukraine. Journal of Fish Diseases, 43(11):1391–1400. Retrieved from: https://doi.org/10.1111/jfd.13239.
20. Stachnik, M., Matras, M., Borzym, E., et al. (2019). Identification and molecular characterisation of iridoviruses of sturgeon in Poland. In: Proceedings of the 19th International Conference on Diseases of Fish and Shellfish, Porto, Portugal, 9–12 September 2019. Abstract 100-P, p. 344.